MaxUp II 双模式mRNA 建库试剂盒12300ES08
产品报价:3853元
更新时间:2024/3/11 13:18:23
产地:上海
品牌:翌圣生物
型号:12300ES08
厂商性质: 生产型,贸易型,服务型,
公司名称: 翌圣生物科技(上海)股份有限公司
翌圣生物科技(上海)股份有限公司 : (13916792673) (400-6111-883)
(联系我时,请说明是在来宝网上看到的,谢谢!)产品报价:3853元
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(联系我时,请说明是在来宝网上看到的,谢谢!)Hieff NGS? MaxUp II Dual-mode mRNA Library Prep Kit for Illumina?
MaxUp II 双模式mRNA 建库试剂盒
产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格(元) | 促销价(元) |
Hieff NGS? MaxUpTM II Dual-mode mRNA Library Prep Kit for Illumina? MaxUpTM II 双模式mRNA 建库试剂盒 | 12300ES08 | 8 T | 3853.00 | 3853.00 |
12300ES24 | 24 T | 9853.00 | 6897.00 | |
12300ES96 | 96 T | 33853.00 | 23697.00 |
试剂盒包含两个独立模块,BOX-I的核心为纯化mRNA所需的oligo(dT)磁珠。BOX-II包含mRNA片段化试剂,反转录试剂,常规和链特异性dscDNA合成,以及后续建库所需的所有试剂。其中链特异性二链合成buffer中将dTTP替换为dUTP,使cDNA第二链中掺入dUTP,而本试剂盒使用的高保真DNA聚合酶无法扩增含尿嘧啶的DNA模板,实现链特异性。提供的所有试剂都经过严格的质量控制和功能验证,最大程度上保证了文库构建的稳定性和重复性。
运输与保存方法
冰袋运输。效期一年。存储温度如下,切不可搞错!
Box I:2-8℃保存;Box II:-20℃保存。
一、 关于操作
1.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
2.请于使用前将试剂盒各组分置于室温解冻。解冻后上下颠倒数次充分混匀,短暂离心后置于冰上待用。
3.推荐在带热盖的PCR仪中进行各步骤反应,使用前应预热PCR仪至反应温度附近。
4.请使用无RNase污染的耗材,并对实验区域定期进行清理,推荐使用ThermoFisher公司的RNAZapTM高效核酸去除喷雾去除RNA酶污染。
5.PCR产物因操作不当极容易产生气溶胶污染,进而影响实验结果准确性。推荐将PCR反应体系配制区和PCR产物纯化检测区进行强制性的物理隔离;配备文库构建专用移液器等设备;定时对各实验区域进行清洁(推荐使用ThermoFisher公司的DNAZapTM高效核酸去除喷雾),以保证实验环境的洁净度。
二、应用范围
本试剂盒适用于起始模板量为0.1-4 μg(体积≤50 μL)的高质量动物、植物和真菌等真核生物的总RNA。如初始RNA浓度偏低,体积超过50 μL,可使用Hieff NGS? RNA Cleaner磁珠进行浓缩。RNA需通过Agilent 2100 Bioanalyzer RNA 6000 Nano/Pico芯片检测,RIN值要求>7,以保证mRNA有完整的poly(A)尾结构。
本试剂盒的mRNA分离模块使用的是oligo (dT)磁珠,只有带poly(A)尾的mRNA才能被提取;其他不具poly(A)尾的RNA,如非编码RNA、无poly(A)尾的mRNA等不能适用本试剂盒。此外,FFPE样本中的mRNA降解严重,通常无完整的poly(A)尾结构,故亦无法使用本试剂盒进行建库。
本试剂盒所制备文库可进行多种RNA-Seq应用,包括:
基因表达(gene expression)
单核苷酸变异检测(single nucleotide variation discovery)
基因融合鉴定(gene fusion identification)
剪切变异体分析(splice variant analysis)
三、关于接头连接(Adapter Ligation)
1.本公司可提供长接头(barcoded Adapter)试剂盒和短接头(也称为小Y接头、不完整接头)试剂盒,客户可根据实验需求进行选择。
目前有48种Indexed Adapters: Hieff NGS? Complete Adapter Kit for Illumina?, Set 1~Set 4(Cat#12615~Cat#12618);单端 96种 Index Primers: Hieff NGS? 96 Single Index Primers Kit for Illumina? , Set 1~Set 2 (Cat#12611~Cat#12612);双端 384 种 Index Primers: Hieff NGS? 384 Dual Index Primers Kit for Illumina? , Set 1~Set 2 (Cat#12613~Cat#12614)。
2.我们建议选用高质量的商业化接头,如客户使用自制接头,请委托具有NGS引物合成经验的公司,并备注需进行严格的防污染控制。此外,进行接头退火操作时,请在超净台完成。每次只操作一种接头,防止交叉污染。
3.使用接头时,请提前将接头取出放在4°C或冰盒上解冻;在室温操作时,实验室温度最好不要超过25°C,防止接头解链。
4.建库过程中,接头浓度过高或过低都会导致建库成功率变低。本试剂盒操作方案中,所加入的接头体积固定为5 μL,请根据初始的RNA投入量,参考表1对接头进行稀释。接头稀释液请选择0.1×TE buffer,稀释过的接头可在4°C保存48小时。
表1 Input Total RNA量与接头浓度推荐表
Input Total RNA | Adapter stock concentration |
100 ng | 1.5 μM |
500 ng | 3 μM |
≥1 μg | 5 μM |
四、关于磁珠纯化与分选(Bead-based Clean Up and Size Selection)
1.建库过程中有多个步骤需要使用DNA纯化磁珠,我们推荐使用Hieff NGS? DNA Selection Beads (Yeasen Cat#12601)或AMPure? XP磁珠(Beckman Cat#A63880)进行DNA纯化和分选。
2.磁珠使用前应先平衡至室温,否则会导致得率下降、分选效果不佳。
3.磁珠每次使用前都应充分振荡混匀或使用移液器上下吹打充分混匀。
4.转移上清时,请勿吸取磁珠,即使微量残留都将影响后续文库质量。
5.磁珠洗涤使用的80%乙醇应现用现配,否则将影响回收效率。
6.产物洗脱前应将磁珠置于室温干燥。干燥不充分容易造成无水乙醇残留影响后续反应;过分干燥又会导致磁珠开裂进而降低纯化得率。通常情况下,室温干燥3-5 min足以让磁珠充分干燥。
7.DNA纯化或长度分选产物如需保存,可使用0.1×TE Buffer洗脱,产物于4°C可保存2天,-20°C可保存1个月。
五、关于文库扩增(Library Amplification)
1.本试剂盒中的文库扩增组分由本公司第二代高保真DNA聚合酶所组成,在第一代的基础上,大大增强了扩增的均一性,即使是低拷贝的基因,也能进行无偏好性地扩增。
2.如果您使用Indexed Adapter(也称为长接头、大Y接头),可使用本试剂盒提供的引物Primer mix进行扩增;如果使用的是“短接头”或者叫“小Y接头”,则需要使用index primers进行扩增,加上相应的barcodes。
3.文库扩增步骤需要严格控制扩增循环数。循环数不足,将导致文库产量低;循环数过多,又将导致文库偏好性增加、重复度增加、嵌合产物增加、扩增突变积累等多种不良后果。表2列举了使用本试剂盒进行文库扩增,Input Total RNA量与相应扩增循环数的推荐。
表2 Input Total RNA量与扩增循环数推荐表*
Input Total RNA | Number of cycles | |
Non-stranded | Stranded | |
100 ng | 12-14 | 14-16 |
1000 ng | 10-12 | 12-14 |
≥2000 ng | 8-10 | 10-12 |
【注】:*由于不同物种和组织所提取的Total RNA中,mRNA的含量差异较大。实验中需根据建库起始量、物种类型及样本处理情况适当调整扩增循环数。
六、关于文库质检(Library Quality Analysis)
1.通常情况下,构建好的文库可通过长度分布检测和浓度检测来进行质量评价。
2.文库浓度检测可使用:基于双链DNA荧光染料的方法,如Qubit?、PicoGreen?等;基于qPCR绝对定量的方法。
3.推荐使用qPCR方法进行文库浓度检测:Qubit?等基于双链DNA荧光染料的浓度测定方法时,无法有效区分单端连接Adapter的产物、两端均未连接Adapter的产物及其他不完整双链结构产物;qPCR绝对定量基于PCR扩增原理,仅定量样品中两端Adapter完整的文库(即可测序的文库),可排除单端或双端都不连接Adapter的不可测序文库的干扰。
4.文库浓度检测不可使用:基于光谱检测的方法,如NanoDrop?等。
5.文库长度分布检测,可通过Agilent Bioanalyzer 2100等基于毛细管电泳或微控流原理的设备进行检测。
一、自备材料
1.纯化磁珠:Hieff NGS? DNA Selection Beads(Cat#12601)或AMPure XP Beads(Cat#A63880)或其他等效产品。
2.RNA质控:Agilent 2100 Bioanalyzer RNA 6000 Nano/Pico Chip或其他等效产品。
3.Adapters:barcoded adapter(长接头)或者无barcode的短接头试剂盒。
4.文库质检:Agilent 2100 Bioanalyzer DNA 1000 Chip/ High Sensitivity Chip或其他等效产品;文库定量试剂。
5.其他材料:无水乙醇、无菌超纯水、低吸附枪头、PCR管、磁力架、PCR仪等。
二、操作流程
图1 mRNA建库试剂盒操作流程
三、操作步骤
3.1 mRNA纯化和片段化(mRNA Purification and Fragmentation)
1.将mRNA Capture Beads从2-8℃取出,静置使其温度平衡至室温,约30 min。
2.准备一个Nuclease free离心管,取0.1-4 μg总RNA,用Nuclease free水将体积补至50 μL,冰上放置备用。
3.颠倒或旋涡振荡混匀磁珠,吸取50 μL磁珠悬液加入至50 μL总RNA样品中,用移液器吹打6次,使其充分混匀。
4.将磁珠与RNA的混合物置于PCR仪中,65℃,5 min;4℃,hold,使得RNA变性。
5.室温孵育5 min,使mRNA与磁珠完全结合。
6.将样品置于磁力架中,室温静置5 min,使mRNA与总RNA分离,小心移除上清。
7.将样品从磁力架上取出,用200 μL Beads Wash Buffer重悬磁珠,移液器反复吹打6次以彻底混匀。将样品置于磁力架中,室温静置5 min,小心移除上清。
8.重复步骤7,共洗涤两次。
9.将样品从磁力架上取出,加入50 μL Tris Buffer重悬磁珠,用移液器反复吹打6次以彻底混匀。
10.将样品置于PCR仪中,80℃,2 min;25℃,hold,将mRNA洗脱下来。
11.将样品从PCR仪中取出,加入50 μL Beads Binding Buffer,用移液器反复吹打6次以彻底混匀。
12.室温放置5 min,使mRNA结合到磁珠上。
13.将样品置于磁力架中,室温静置5 min,小心移除上清。
14.将样品从磁力架上取出,用200 μL Beads Wash Buffer重悬磁珠,移液器反复吹打6次以彻底混匀,将样品重新放回
至磁力架中,室温静置5 min,吸掉全部上清。
【注】:最后需要用10 μL移液器吸干净残留液体。
15.将样品从磁力架上取出,用18.5 μL Frag/Prime buffer重悬磁珠,用移液器吹打6次以彻底混匀;将样品置于PCR仪中(预设为94℃或85℃),可参考表3选择片段化程序,但不同物种片段化的效果有差异,客户可先根据自己的情况,做个片段化时间的梯度,比如94℃,5 min或85℃,6 min。使用Agilent 2100分析双链cDNA纯化产物大小。
表3 mRNA片段化程序选择
插入片段大小(bp) | 打断程序 |
150-200 | 94°C,6 min; |
200-300 | 94°C,5 min; |
250-450 | 85°C,8 min; |
400-550 | 85°C,6 min; |
16. 片段化程序结束后,为防止poly(A)尾RNA与磁珠结合,请立即将样品置于磁力架中,待溶液澄清后,转移17 μL上清至一个新的nuclease free离心管中,立刻进入第一链合成反应。
3.2 第一链cDNA的合成:
1. 将第一链合成试剂从-20°C取出,颠倒混匀后瞬离。按表4所示,配制第一链cDNA合成的反应液。
表4 第一链cDNA合成反应体系
名称 | 体积(μL) |
Fragmented mRNA | 17 |
Strand Specificity Reagent | 6 |
1st Strand Enzyme Mix | 2 |
2. 使用移液器轻轻吹打混匀,瞬离将反应液离心至管底。
3. 将上述PCR管置于PCR仪中,按照表5所示设置反应程序,进行第一链cDNA的合成。反应结束后立即进行第二链cDNA的合成。
表5 第一链cDNA合成反应程序
温度 | 时间 |
热盖 105°C | On |
25°C | 10 min |
42°C | 15 min |
70°C | 15 min |
4°C | Hold |
3.3第二链cDNA的合成/末端修复/加A:
1. 将第二链合成试剂从-20 °C取出,解冻后颠倒混匀;按照表6所示,配制第二链cDNA合成/末端修复/加A反应液。
表6 第二链cDNA合成反应体系
名称 | 体积(μL) |
1st Strand cDNA | 25 μL |
2nd Strand Buffer ( dNTP or dUTP)* | 30 μL |
2nd Strand Enzyme Master Mix | 5 μL |
【注】:*如构建普通mRNA文库,请使用含dNTP的buffer;如构建链特异性mRNA文库,请使用含dUTP的buffer。
2. 使用移液器轻轻吹打混匀,瞬离将反应液离心至管底。
3. 将上述PCR管置于PCR仪中,按照表7所示设置反应程序,进行第二链cDNA的合成。
表7 第二链cDNA合成反应程序
温度 | 时间 |
热盖 105°C | on |
16°C | 30 min |
72°C | 15 min |
4°C | Hold |
3.4 接头连接(Adapter Ligation)
该步骤可在末端修复和dA尾添加的产物末端,连接特定的Illumina?接头。
1. 参考注意事项三中的表1,根据Input RNA量,稀释Adapter至合适浓度。
2. 将表8中各试剂解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。
3. 于3.3步骤结束后的PCR管中继续配制表8所示反应体系。
表8 Adapter Ligation体系
名称 | 体积(μL) |
dA-tailed DNA | 60 |
Ligation Enhancer | 30* |
Quick T4 DNA Ligase | 5 |
DNA Adapter | 5** |
【注】:*Ligation Enhancer使用前请上下颠倒、振荡,充分混匀并瞬时离心后使用。
**本公司接头原始浓度为15 μM, 请根据注意事项三表1的提示,用0.1×TE buffer对接头进行稀释,使接头添加体积固定为5 μL。
4. 使用移液器轻轻吹打混匀,并短暂离心将反应液收集至管底。
5. 将PCR管置于PCR仪中,设置表9所示反应程序,进行接头连接反应:
表9 Adapter Ligation反应程序
温度 | 时间 |
热盖 | Off |
20°C | 15 min |
4°C | Hold |
【注】:当Input DNA量较低时,可尝试将连接时间延长一倍,这将提高连接效率。
3.5 连接产物纯化和片段大小分选(Post Ligation Clean Up and Size Selection)
目前有两个方案应用于该步骤,当插入片段<200 bp时,使用方案A;当插入片段≥200 bp时,使用方案B。
方案A:适用于插入片段150-200 bp的文库(如mRNA打断方案为94°C,6 min)
1. 准备工作:将Hieff NGS? DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,室温平衡至少30 min。配制80%乙醇。
2. 涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证充分混匀。
3. 吸取60 μL Hieff NGS? DNA Selection Beads(0.6×,Beads:DNA=0.6:1)至Adapter Ligation产物中,涡旋或吹打混匀,室温孵育5 min。
4. 将PCR管短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体,待溶液澄清后(约5 min),小心移除上清。
5. 保持PCR管始终置于磁力架中,加入200 μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育30 sec后,小心移除上清。
6. 重复步骤5,总计漂洗两次。
7. 保持PCR管始终置于磁力架中,开盖空气干燥磁珠至刚刚出现龟裂(不超过5 min)。
8. 将PCR管从磁力架中取出,加入21 μL ddH2O,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打至充分混匀,室温静置5 min。将PCR管短暂离心并置于磁力架中静置,待溶液澄清后(约5 min),小心移取20 μL上清至新PCR管中,进行PCR扩增。
方案B:适用于插入片段大于200 bp的文库(如mRNA打断方案为94°C,5 min或85℃,8 min)
方案B-1:接头连接产物的纯化
1. 准备工作:将Hieff NGS? DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,室温平衡至少30 min。配制80%乙醇。
2. 涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证充分混匀。
3. 吸取60 μL Hieff NGS? DNA Selection Beads(0.6×,Beads:DNA=0.6:1)至Adapter Ligation产物中,涡旋或吹打混匀,室温孵育5 min。
4. 将PCR管短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体,待溶液澄清后(约5 min),小心移除上清。
5. 保持PCR管始终置于磁力架中,加入200 μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育30 sec后,小心移除上清。
6. 重复步骤5,总计漂洗两次。
7. 保持PCR管始终置于磁力架中,开盖空气干燥磁珠至刚刚出现龟裂(不超过5 min)。
8. 将PCR管从磁力架中取出,加入102 μL ddH2O,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打至充分混匀,室温静置5 min。将PCR管短暂离心并置于磁力架中静置,待溶液澄清后(约5 min),小心移取100 μL上清至新PCR管中,准备进行双轮分选。
【注】:Ligation Enhancer中含有的高浓度PEG会对磁珠双轮分选产生影响,所以必须经过一轮纯化后再进行双轮分选。
方案B-2:双轮分选
1. 请涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证混匀。
2. 根据DNA片段长度要求,参考表10,在上述100 μL DNA中加入第一轮分选磁珠,涡旋或移液器吹打10次混匀。
表10文库分选推荐磁珠比例
DNA文库插入片段大小(峰值,bp) | ~ 200 | ~ 300 | ~ 400 | ~500 | |
打断条件 | 94℃,5 min | 85℃,8 min | 85℃,8 min | 85℃,6 min | |
短接头连接之后分选 | 第一轮体积比 | 0.80× | 0.65× | 0.60× | 0.54× |
第二轮体积比 | 0.20× | 0.15× | 0.15× | 0.10× | |
长接头连接之后分选或文库扩增之后分选 | 第一轮体积比 | 0.74× | 0.62× | 0.56× | 0.52× |
第二轮体积比 | 0.15× | 0.15× | 0.15× | 0.10× |
【注】:此表推荐的双轮分选比例适用于AMPure? XP磁珠和Hieff NGS? DNA Selection Beads;表中“×”表示样品DNA体积。如所需文库插入片段主峰为300 bp时,若在短接头连接之后分选,样品DNA体积为100 μL,则第一轮分选磁珠使用体积为0.65×100 μL=65 μL,第二轮分选磁珠使用体积为0.15×100 μL=15 μL;若在长接头连接之后分选,样品DNA体积为100 μL,则第一轮分选磁珠使用体积为0.62×100 μL=62 μL,第二轮分选磁珠使用体积为0.15×100 μL=15 μL。
3. 室温孵育5 min。
4. 将PCR管短暂离心并置于磁力架中,待溶液澄清后(约5 min),小心转移上清到干净的离心管中,残留1-2 μL溶液于管底。
5. 参考表10向上清中加入第二轮分选磁珠。
6. 涡旋混匀或移液器吹打10次混匀,室温静置5 min。
7. 将PCR管短暂离心并置于磁力架中,待溶液澄清后(约5 min),小心移除上清。
8. 保持PCR管始终处于磁力架中,加入200 μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠,室温孵育30 sec,小心移除上清。
9. 重复步骤8。
10. 保持PCR管始终处于磁力架中,开盖干燥磁珠至刚刚出现龟裂(约5 min)。
11. 将PCR管从磁力架中取出,加入21 μL ddH2O,涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打充分混匀,室温静置5 min。
12. 将PCR管短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体。待溶液澄清后(约5 min),小心转移20 μL上清至干净管中。
3.6文库扩增(Library Amplification)
该步骤将对纯化或长度分选后的接头连接产物进行PCR扩增富集。
1. 将表11中的试剂解冻后颠倒混匀,置于冰上备用。
2. 于无菌PCR管中配制表11所示反应体系。
表11-A 短接头连接产物PCR反应体系 表11-B 长接头连接产物PCR反应体系
组分名称 | 体积(μL) |
2×Super Canace? II High-Fidelity Mix | 25 |
Universal Primer/ i5 Primer* | 2.5 |
Index Primer/ i7 Primer* | 2.5 |
Adapter Ligated DNA | 20 |
组分名称 | 体积(μL) |
2×Super Canace? II High-Fidelity Mix | 25 |
Primer mix** | 5 |
Adapter Ligated DNA | 20 |
【注】:*如果使用的是无barcode的接头,俗称短接头(小Y接头),请使用短接头试剂中配备的index primer进行扩增(Cat#12611,Hieff NGS? 96 Single Index Primers Kit for Illumina?, Set 1; Cat#12612, Hieff NGS? 96 Single Index Primers Kit for Illumina?, Set 2。Cat#12613, Hieff NGS? 384 Dual Index Primers Kit for Illumina? , Set 1; Cat#12614,Hieff NGS? 384 Dual Index Primers Kit for Illumina? , Set 2。)
**如果您使用的是barcoded adapter,俗称长接头(大Y接头),即adapter上带有barcode的完整接头,可用试剂盒中的Primer Mix进行扩增;
3. 使用移液器轻轻吹打或振荡混匀,并短暂离心将反应液收集至管底。
4. 将PCR管置于PCR仪中,设置表12示反应程序,进行PCR扩增。
表12 PCR扩增反应程序
温度 | 时间 | 循环数 |
98°C | 1 min | 1 |
98°C | 10 sec | 参照表2(注意事项五) |
60°C | 30 sec | |
72°C | 30 sec | |
72°C | 5 min | 1 |
4°C | Hold | - |
3.7 扩增产物磁珠纯化或分选(Post Amplification Clean Up/Size Selection)
同3.5步骤中纯化操作步骤。使用Hieff NGS? DNA Selection Beads(0.9×,Beads:DNA=0.9:1)纯化文库扩增产物。
3.8 文库质量控制
通常情况下,构建好的文库可通过浓度检测和长度分布检测来进行质量评价,具体请参见注意事项六。
图2. mRNA不同打断时间对应的双链cDNA片段范围。取1 μg Universal Human Reference RNA,经mRNA提取试剂盒提取后,分别以94°C,6 min、85℃,8 min和85℃,5 min处理。打断后mRNA进行双连cDNA的合成,经过1.8×磁珠回收后,通过Agilent 2100 Bioanalyzer进行检测。
【注】:本结果使用的RNA是Agilent公司的Universal Human Reference RNA,若使用其他来源的RNA,最好优化打断时间。
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Hieff NGS? Complete Adapter Kit for Illumina?, Set 3 | 12615/16ES04/16 | 12×4/12×16 T | 1256/4536 |
Hieff NGS? Complete Adapter Kit for Illumina?, Set 4 | 12617/88ES04/16 | 12×4/12×16 T | 1256/4536 |
Hieff NGS? Tagment Index Kit for Illumina?,(96 Index) | 12610ES96 | 96 T | 1365 |
建库模块 | 产品编号 | 规格 | 价格(元) |
Hieff NGS? Ultima DNA Ligation Module | 12607ES24/96 | 24/96 T | 3263/10863 |
Hieff NGS? Ultima Endprep Mix | 12608ES24/96 | 24/96 T | 2066/6166 |
Hieff NGS? Fast-Pace DNA Fragmentation Reagent | 12609ES24/96 | 24/96 T | 1462/5362 |
2×Super Canace?Ⅱ High-Fidelity Mix for Library Amplification | 12621ES24/96 | 24/96 T | 583/1783 |
Hieff NGS? Dual-Mode cDNA Synthesis Kit | 12250ES24/96 | 24/96 T | 4885/16485 |
文库定量 | 产品编号 | 规格 | 价格(元) |
Hieff NGS? Library Quantification Kit for Illumina?, qPCR Master Mix | 12302ES05 | 500 T | 1526 |
Hieff NGS? Library Quantification Kit for Illumina?, DNA Standard (1-6) | 12307ES09 | 6×96 μL | 2126 |
dsDNA HS Assay Kit for Qubit? | 12640ES60/76 | 100/500 T | 686/2696 |
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