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更新时间：2023/10/18 14:06:33
产地：美国
品牌：Sable System
型号：SSI
厂商性质： 生产型,贸易型,服务型,
公司名称： 北京易科泰生态技术有限公司
北京易科泰生态技术有限公司 : (13701252261) (13701252261)
（联系我时，请说明是在来宝网上看到的，谢谢！）SSI 果蝇呼吸代谢与活动观测系统
果蝇作为重要的实验动物，易于培育、生活史短、性状变异多，广泛应用于遗传学、发育生物学、基础医学乃至生物检测如室内空气污染检测等，其呼吸代谢的测量成为其最为基本的研究技术。
美国 Sable 公司的果蝇呼吸代谢测量系统用于精确测量果蝇等昆虫乃至其它动物呼出二氧化碳量及耗氧量等，并可计算呼吸商、同步化监测昆虫活动及其与呼吸代谢的关系等，广泛应用于果蝇及其它小型昆虫等动物呼吸代谢有关的研究，如遗传学、医学实验、病虫害防治、预防医学研究实验、昆虫等动物生态学等。系统由二氧化碳分析仪、氧气分析仪、多通道气路转换器、气流控制器、数据采集器及程序软件、呼吸室等组成。可根据研究内容及经费预算定制 8 通道（可同时测量 7 个果蝇的呼吸代谢）或更多通道观测系统，或选择同时测量 CO2、O2、RQ 及 H2O，亦可根据要求只选择测量 CO2或 O2的测量系统。
1) 模块式结构，具备强大的系统扩展功能和灵活多样的实验配置，是目前世界上果蝇呼吸代谢研究应用最 广、发表论文最多的仪器系统
2) 标准配置为 8 通道，可扩展为 16 通道、24 通道或更多通道，应用于果蝇等微小昆虫或其它微小生物 呼吸代谢测量
3) 高灵敏度、高精确度 O2/CO2 分析仪，是目前世界上唯一可直接对单个果蝇等微小生物在线实时分析 （开放式分析）的仪器系统
4) 可通过选配 AD--‐2 红外活动监测装置，实时同步化监测果蝇等活动强度（昆虫活动呼吸室置入红外活动 监测仪上，昆虫的任何活动都会导致反射红外光强度的细微变化，这种细微的变化经检测器监测到并加 以放大，转变成电压信号经由数据采集器采集和分析，最终反映昆虫的活动状况）
5) 可选配温度调控系统进行温度控制
6) 可以设置不同的测量方法，如封闭式、开放式、抽样流动注射等测量技术
技术指标：
1. 氧气分析测量：氧气测量范围 0－100％，分辨率 0.0001%，精确度优于 0.1％，响应时间小于7秒，24小时漂 移低于0.01％，20分钟噪音低于0.002％pk-pk；温度、压力补偿,4通道模拟输出，16bit分辨率；数码过滤 （噪音）0-50秒可调，增幅0.2 秒，内置A/D转换器分辨率24 bits；可同时测量温度（测量范围0-60℃，分辨 率 0.001℃）和气压（测量范围30-110kPa，分辨率0.0001kPa）；具两行文字数字LCD 显示屏，具背光，可同 时显示氧气含量和气压；大小33x25x10cm，重量约4.5kg。
2. 高精度差分氧气分析仪（备选），适于果蝇等微小昆虫的开放式在线呼吸代谢测量，测量范围 0－100%，精度 0.1%，分辨率 0.0001%
3. 二氧化碳分析测量（CA-10）：双波长非色散红外技术，测量范围 0－5％或 0－15％两级选择（双程），内置 数据采集系统，实时测量，响应时间小于1秒，分辨率优于0.0001%或1ppm（可达0.1ppm），精确度1%，建议气 流5－2000ml/分钟，噪音小于2ppm，24小时漂移低于0.002%，通过软件温度补偿，采样频率10Hz；具两行文字 数字LCD显示屏，具背光，可同时显示CO2含量和气压；4通道模拟输出，16bit分辨率，具数码过滤（噪音）； 大小33x25x10cm，重量约4.5kg
4. 超高精度二氧化碳分析测量（备选）：差分非色散红外气体分析仪，用于在线测量果蝇等微小生物或蜱螨类微 小动物的呼吸代谢，测量范围 0－3000ppm，分辨率达0.01ppm，精确度1%
5. RH－300 水气测量仪（备选）：测量范围 0.2％－100％（相对湿度）、分辨率 0.001%（相对湿度），露点温 度-40~40℃、分辨率 0.002℃（露点温度），水汽密度0-10μg/ml、分辨率0.0001μg/ml，水汽压力0-20kPa、分 辨率0.01Pa；模拟输出16 bits，建议气流速度5-2000ml/min，具两行文字数字LCD显示屏，具背光，可同时显 示水汽含量和温度
6. SS4 气体二次抽样单元：包括一个泵、针阀（控制进出泵体的气流）和气流计（0－2000ml/m）；隔膜泵，滚 轴马达，最大流速 2-4L/min；热桥式气流计，分辨率 1ml/min，精确度 2%；模拟输出 12 bits；重量约 2kg
7. 气路转换器：8 通道（包括一个 Baseline 通道），采样频率 10Hz
8. UI-2 数据采集器，12 通道，8 个模拟输入，16bit 分辨率；4 个温度输入，分辨率 0.001 摄氏度；8 个数 字输出用于系统控制，1 个 16bit 计数器，2 通道电压输出，脉冲宽度调制
9. 昆虫玻璃气室：超低二氧化碳和水气吸收或通透性， 直径 33mm，标配包括 50mm、
100mm 两种长度（可选配其它长度），气路接口 OD3.2mm，特殊设计的双通（两端开通）密封盖和挡板装置， 以使气流均匀分布
10. 微型呼吸室：呼吸室及密封盖均为硼硅玻璃材质，用于果蝇等微小昆虫及昆虫卵等的呼吸测量，直径 9.0mm， 体积 0.5－1.0ml，气路接口 OD1.5mm，硼硅玻璃密封盖
11. 红外活动监测（可选配）：红外发射与检测技术，900nm 近红外光，不会被昆虫察觉而造成干扰，也不会产生 明显的热效应，用于监测0.0005-1g的各种昆虫、蜱螨等无脊椎动物的活动状态，以研究昆虫等动物的生理生 态、昆虫活动与温度的关系、昆虫活动与呼吸代谢的关系、昆虫健康状况及生理状态、杀虫剂对昆虫的影响及 最小致死量、临界热极值 CTmax(critical thermal maximum)、不连续气体交换
DGC(discontinuous gas exchange cycle)等。
12. 专业技术配置与培训，包括封闭式、开放式、抽气式、推气式、抽样流动注射法等不同技术装配与操作技术培训。
Donna G. Folk 等（The Journal of Experimental Biology, 2007）利用配备有红外昆虫活动监测装置的SSI果蝇呼吸代谢测量系统，对不同品系的果蝇热耐受性进行了研究。系统配置主要包括高精度 CO2 分析仪、8 通道气路切换系统（组成 8 通道测量系统）、AD-1 活动监测装置、气体精确控制采样系统、数据采集与分析系统、温度调控系统及温度传感器。果蝇呼吸（图中黑色实线）和活动（图中红色实线）同步纪录数据参见 Fig.2，图中 A、 B、C、D 分别表示指数上升相、平稳相、致死下降相和致死后峰四个时相（phase）。结果表明，果蝇性别对 Q10 没有显著影响，但选择性处理
（HN－high knockdown lines, LN－low knockdown lines, CN－control knockdown lines）对Q10 具有显著影响。
适合度（fitness）通常以个体所繁殖的后代数量来衡量，但实际上适合度又是生物发育过程和生理过程的结果，这与其新陈代谢有着密切的关系。芬兰于韦斯屈莱大学（University of Jyv?skyl?）生物与环境科学系（Department of Biological and Environmental Science）的 Terhi Honkola（2009），利用 SSI 多通道昆虫呼吸测量系统，对近交、杂交、环境胁迫（盐胁迫）对果蝇（Drosophila）新陈代谢速率的影响进行了测量研究，结果表明，近交果蝇呼吸代谢率低于杂交果蝇，从而支持“低代谢率意味着低适合度”的理论；盐胁迫对果蝇呼吸代谢影响不显著。
Greg Suh等（2004）在Nature上发表了“A single population of olfactory sensory neurons mediates an innate avoidance behavior in
Drosophila”的文章，利用SSI果蝇呼吸测量系统及嗅觉行为实验装置等，实验发现果蝇天生有回避受胁果蝇（比如通过震动造成对果蝇的胁迫）发出的气味的本性，而CO2 是这种气味的主要成分之一并能诱导其它果蝇的回避行为。
明尼苏达大学生态、进化与行为学系AzizKhazaeli等（2005），利用SSI多通道果蝇呼吸测量系统，测量了不同年龄成体黑腹果蝇的呼吸代谢，以确定呼吸代谢遗传变异与寿命的关系，结果表明，年龄对呼吸代谢的影响显著表现在年轻时期（5日龄到16 日龄），16日龄后果蝇年龄对呼吸代谢的影响显著降低，没有证据表明呼吸代谢率与存活存在负相关，即研究结果不支持“rate of living” 理论（该理论认为高呼吸代谢率则意味着低寿命）。
Montooth, K. L, J. H. Marden and A. G. Clark. (2003). Mapping determinants of variation in energy metabolism respiration and flight in Drosophila. Genetics, 165, 623-635
Voorhies, W. A. V, A. A. Khazaeli and J. W. Curtsinger. (2003). Physiology of aging selected contribution: Long-lived Drosophila melanogaster lines exhibit normal metabolic rates. J. Appl. Physiol. 95, 2605-2613
Suh, G. B., A. M. Wong, A. C. Hergarden, etc. (2004). A single population of olfactory sensory neurons mediates an innate avoidance behavior in Drosophila. Nature, 431, 854-859
Voorhies, W. A. V, A. A. Khazaeli and J. W. Curtsinger. (2004). Tesing the “rate of living” model: further evidence that longevity and metabolic rate are not inversely correlated in Drosophila melanogaster. J. Appl. Physiol. 97, 1915-1922
Khazaeli, A. A., W. V. Voorhies and J. W. Curtsinger. (2005). Longevity and metabolism in Drosophila melanogaster: Genetic correlations between life span and age-specific metabolic rate in populations artificially selected for long life. Genetics, 169, 231-242
Orr, W. C., S. N. Radyuk, L. Prabhudensai, etc. (2005). Overexpression of Glutamate-Cysteine Ligases extends life span in Drosophila melanogaster. Journal of Biological Chemistry, 280(45), 37331-37338
Celotto, A. M., A. C. Frank, S. W. McGrath, etc. (2006). Mitochondrial encephalomyopathy in Drosophila. J. Neuroscience, 26(3), 810-820
Folk, D. G. L. A. Hoekstra and G. W. Gilchrist. (2007). Critical thermal maxima in knockdown-selected drosophila: are thermal endpoints correlated? J. Experi. Bio. 210, 2649-2656
Lighton, J. R. B. and P. E. Schilman. (2007). Oxygen reperfusion damage in an insect. PLoS ONE,
(12), 1-6
Icreverzi, A., de la Cruz, A. F., Van Voorhies, W. A., & Edgar, B. A. (2012). Drosophila cyclin D/Cdk4 regulates mitochondrial biogenesis and aging and sensitizes animals to hypoxic stress. Cell Cycle, 11(3), 554-68.
M?lich, A. B., F?rster, T. D., & Lighton, J. R. (2012). Hyperthermic overdrive: oxygen delivery does not limit thermal tolerance in Drosophila melanogaster. Journal of Insect Science, 12, 1-7
Tinkerhess, M. J., L. Healy, M. Morgan, etc. (2012). The Drosophila PGC-1a Homolog spargel modulates the physiological effects of endurance exercise. PLoS ONE, 7(2), 1-8
Castaneda, L. E. and R. F. Nespolo. (2013). Phenotypic and genetic effects of contrasting ethanol environments on physiological and developmental traits in Drosophila melanogaster. PLOS ONE,
8(3), 1-8
Ma, J., Benson, A. K., Kachman, S. D., Jacobsen, D. J., & Harshman, L. G. (2013). Drosophila melanogaster Selection for Survival after Infection with Bacillus cereus Spores: Evolutionary Genetic and Phenotypic Investigations of Respiration and Movement. International journal of evolutionary biology, 2013.
Ma, J., Benson, A. K., Kachman, S. D., Jacobsen, D. J., & Harshman, L. G. (2013). Drosophila melanogaster Selection for Survival after Infection with Bacillus cereus Spores: Evolutionary Genetic and Phenotypic Investigations of Respiration and Movement. International journal of evolutionary biology, 2013.
Wit, J., Sarup, P., Lupsa, N., Malte, H., Frydenberg, J., & Loeschcke, V. (2013). Longevity for free? Increased reproduction with limited trade-offs in Drosophila melanogaster selected for increased life span. Experimental gerontology, 48(3), 349-357.
Jensen, P., Overgaard, J., Loeschcke, V., Schou, M. F., Malte, H., & Kristensen, T. N. (2014).
Inbreeding effects on standard metabolic rate investigated at cold, benign and hot temperatures in Drosophila melanogaster. Journal of insect physiology, 62, 11-20.
Lane, S. J., Frankino, W. A., Elekonich, M. M., & Roberts, S. P. (2014). The effects of age and lifetime flight behavior on flight capacity in Drosophila melanogaster. The Journal of experimental biology, 217(9), 1437-1443. [and see Controlled Atmospheres applications]
