图1. Neon转染系统的Jurkat细胞高转染效率
使用Neon转染系统对Jurkat细胞转染24小时后EGFP标记报告载体的胞内摄取。图B是图A的对应荧光图像。
基于Neon转染系统的各细胞系成功转染示例
| 细胞系 | 细胞类型 | 转染效率 (%)* | 细胞存活率 (%)* |
|---|
MEF原代
| 胚胎成纤维细胞
| 80
| 75
|
293A
| 肾脏
| 90 | 90 |
| 3T3-L1 | 小鼠脂肪
| 85
| 80
|
A549
| 肺
| 75
| 92
|
巨噬细胞
| 人（腹膜）
| 60
| 60
|
MCF-7
| 乳腺
| 70
| 80
|
HeLa
| 宫颈癌
| 90 | 87
|
HL-60
| 血液 | 55
| 70 |
PBMC
| 血液
| 23
| 95
|
大鼠原代脑皮质细胞
| 脑，皮质
| 42
| 98.5
|
| 大鼠原代海马细胞 | 脑，海马体
| 37
| 77
|
小鼠巨噬细胞系Raw 264.7
| 血液
| 74
| 80
|
| |
* 转染 效率通过存活细胞和死亡细胞总数计算得出。
Neon细胞数据库提供大量细胞系的相关方案与参考信息。
不同于基于试管的标准电穿孔室，Neon系统使用一种专利的生物相容性移液器枪头室。这一设计有助于生成更均匀的电场，从而更有利于维持生理条件，实现远超过传统电穿孔技术的细胞存活率*。
* 引自Kim JA, Cho K, Shin MS, et al. (2008) A novel electroporation method using a capillary and wire-type electrode. Biosens Bioelectron 23(9):1353-1360.
图2. 标准电穿孔试管Vs.Neon移液器枪头。
独特的移液器电极设计证明能够提高电场的均匀度，从而降低细胞毒性，提高转染效率。
转染过程从未如此简单。只需吸取细胞和质粒混合物到Neon移液器枪头中，然后插入移液器底座并按下开始键，最后将转染后的细胞移入您的培养皿即可。无需基于试管的样品注入抽出、加盖开盖操作。Neon系统遵循简单的3步转染程序，在Neon移液器枪头内部进行转染。
不必再为确定哪种专用缓冲液试剂盒适用于所关注的细胞类型而烦恼——我们提供的转染试剂盒兼容所有细胞类型，彻底简化您的工作。您既可使用我们针对常用细胞类型而优化的转染方案，也可以遵循标准简易优化程序对任何新细胞类型进行转染。
