流式细胞仪操作规程
- 来宝网2007年6月4日 16:47 点击:4993
流式细胞仪操作规程目录
1:淋巴细胞亚群测定
2:HLA-B27测定
3:CD55/CD59测定
4:血小板抗体测定
5:红细胞抗体测定
6:粒细胞抗体测定
7:白血病免疫分型测定
8:淋巴细胞T细胞亚群细胞内因子IFN-γ/IL-4测定
9:XL操作步骤
淋巴细胞亚群测定
(流式细胞仪)
医院检验科
操作规程文件号:
200 年 月 日起实施
第1版
(共3页)
本规程每2年复审一次
复审日期: 年 月 日
复审人:
规程编写者:
审 批 者:
批准日期: 年 月 日
文件分发部门和/或个人
院档案室保管者:
检验科 主任:
检验科 实验室:
淋巴细胞亚群测定
(CD系列)
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 双/三色直接免疫荧光法。荧光素标记的各种单克隆抗体加入到全血中,与白细胞膜上相应的抗原结合,经过溶血、洗涤(和固定)等步骤后,在流式细胞仪上进行分析,从而得到淋巴细胞亚群的百分数。淋巴细胞表面抗原分布如下:T淋巴细胞:CD3+;B淋巴细胞:CD5+,CDl9+;辅助性T淋巴细胞:CD3+CD4+;抑制性T淋巴细胞:CD3+CD8+;NK细胞:CD3-CDl6+56+等。根据淋巴细胞膜上CD分子表达的不同,流式细胞仪可以分辨出淋巴细胞及其各种不同的亚群,利用计算机软件计算出淋巴细胞亚群的百分数。 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,空腹采血。 采集部位 静脉采血 抗凝剂 EDTA或肝素抗凝血 要求 1.样本量至少1ml。 2.样本应在采集后6小时内处理,冷冻的标本不能用。 3.样本白细胞计数应在4.0-10.0×109/L之间。若>10.0×109/L, 样本需要稀释,用PBS稀释;若<4.0×109/L,应分离单个核 细胞。 4.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 贝克曼库尔特 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:鞘液 液体 4:清洗液 液体 5:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
样本制备: 1)按照要求,分别向已编好号的试管中加入20 ul单克隆抗体和同型对照 2)分别向试管中加入混匀的100u1抗凝血。 3)混匀,避光,室温孵育20-30分钟 4)溶血:a. OptiLyse C(按说明书步骤溶血) b. 使用COULTER Q—PREP制备系统 开机---显示READY灯亮---选择35SEC灯亮---开门---放入试管关门---自动进行溶血---显示READY灯亮---开门---取出试管---再进行下一个样品测定。 (*溶血前确认A/B/C管路充满并能打出液体) 5)上机测样(可根据样本情况选择洗或不洗上样) |
报告结果 报告百分数(和绝对值) |
操作性能 精密度 批内五次重复CV<2% 灵敏度 500—1000个荧光素分子 |
参考值(百分数(绝对值)) CD3+ 60.8-75.4%(1141-1880) CD4+ 29.4-45.8%(478-1072) CD8+ 18.2-32.8%(393-742) NK 9.5-23.5% (175-567) Th/Ts 1.05-2.03 |
临床意义 1.T、B淋巴细胞亚群是重要的免疫状态检测指标,在肿瘤、免疫缺陷、病毒感染,自身免疫性疾病、创伤、急性感染、多脏器功能衰竭、器官移植等具有临床诊断、病情判断、治疗等价值。 临床常用Th/Ts比值来判断病人的免疫状况。 Th/Ts比值升高:表示免疫功能亢进:见于自身免疫性疾病,如SLE、类风湿性关节炎、自身免疫性溶血性贫血、重症肌无力以及HBsAg+乙肝等。 Th/Ts比值减低:表示免疫功能下降:艾滋病、病毒感染、肿瘤病人、慢活肝和活动性肝硬化、再生障碍性贫血、粒细胞减少患者。 2:NK细胞主要破坏各种肿瘤细胞和感染某些病毒、细菌的细胞,所以在抗肿瘤和防御疾病中起主要作用。NK活性减低主要见于各种恶性肿瘤、自身免疫性疾病、病毒感染、应用免疫抑制剂,疲劳综合征病人等,NK活性随年龄增长而减退。NK细胞也参与第二型超敏反应和移植物抗宿反应,白介素-2治疗后;外周血NK细胞增加。 |
方案(Protocol) |
HLA-B27测定
(流式细胞仪)
医院检验科
操作规程文件号:
200 年 月 日起实施
第1版
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HLA-B27测定
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 双色直接免疫荧光法。将HLA-B27-FITC/B7-PE单克隆抗体加入到全血中,与白细胞膜上相应的抗体结合,经过溶血、洗涤(和固定)等步骤后,在流式细胞仪上进行分析,测定HLA-B7阴性而HLA-B27阳性细胞的平均荧光强度和所占的百分比。 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,空腹采血。 采集部位 静脉采血 抗凝剂 EDTA或肝素抗凝血 要求 1.样本量至少1ml。 2.样本应在采集后6小时内处理,冷冻的标本不能用。 3.样本白细胞计数应在4.0-10.0×109/L之间。若>10.0×109/L, 样本需要稀释,用PBS稀释;若<4.0×109/L,应分离单个核 细胞。 4.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 贝克曼库尔特 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:鞘液 液体 4:清洗液 液体 5:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
样本制备: 1)按照要求,分别向已编好号的试管中加入20 ul单克隆抗体和同型对照(IgG 2)分别向试管中加入混匀的100u1抗凝血。 3)混匀,避光,室温孵育20-30分钟 4)溶血:a. OptiLyse C(按说明书步骤溶血) b. 使用COULTER Q—PREP制备系统 开机---显示READY灯亮---选择35SEC灯亮---开门---放入试管关门---自动进行溶血---显示READY灯亮---开门---取出试管---再进行下一个样品测定。 (*溶血前确认A/B/C管路充满并能打出液体) 5)洗、离心、上机测样(备注: 测B27一定要至少洗一遍方可上机检测) |
报告结果 报告阴阳性 |
操作性能 精密度 批内五次重复CV<2% 灵敏度 500—1000个荧光素分子 |
参考值 阳性:HLA-B27阳性而HLA-B7阴性细胞的平均荧光强度在8.0以上。 |
临床意义 HLA复合体位于第6号染色体的短臂上,该区DNA片段长度约3000-4000KB,占人体整个基因的1/3000,HLA-B27是HLA-I类基因中B位点上的一个等位基因,与多种疾病具有相关性,尤其是强直性脊柱炎。 |
方案(Protocol) |
CD55/CD59测定
(流式细胞仪)
医院检验科
操作规程文件号:
200 年 月 日起实施
第1版
(共3页)
本规程每2年复审一次
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CD55/CD59测定
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 双色直接免疫荧光法。近年的研究表明,红细胞和白细胞膜上CD55和CD59分子的表达量和缺乏表达细胞的数量对PNH诊断和鉴别有重要意义。血细胞(红细胞和白细胞)通过膜上的抗原分子与荧光素标记的CD55或CD59的多克隆抗体结合。用流式细胞仪检测CD55或CD59表达阳性细胞百分数。 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,空腹采血。 采集部位 静脉采血 抗凝剂 EDTA或肝素抗凝血 要求 1.样本量至少1ml。 2.样本应在采集后6小时内处理,冷冻的标本不能用。 3.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 贝克曼库尔特 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:鞘液 液体 4:清洗液 液体 5:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
样本制备: (一)白细胞CD55/CD59检测 1.准备2支流式细胞仪专用管,分别标记。分别向二管中加入样品100ul。 2.溶血:a. OptiLyse C(按说明书步骤溶血) b. 使用COULTER Q—PREP制备系统 开机---显示READY灯亮---选择35SEC灯亮---开门---放入试管关门---自动进行溶血---显示READY灯亮---开门---取出试管---再进行下一个样品测定。 (*溶血前确认A/B/C管路充满并能打出液体) 3.离心后分别加入CD55/CD59 10ul和相应的同型对照10ul。避光20-30分钟。 4.洗涤离心 5.上机测样 (二)红细胞CD55/CD59检测 1.准备2支流式细胞仪专用管,分别标记 2.分别加入CD55/CD59 10ul和相应的同型对照10ul。 3.向二管中加入1:200稀释的样品100ul(可根据红细胞的数量调整),避光20-30分钟。 4.洗涤离心。 5.混匀、上机测样。 |
报告结果 报告百分数 |
操作性能 精密度 批内五次重复CV<2% 灵敏度 500—1000个荧光素分子 |
参考值 CD55>97% CD59>97% PNH的临界值:RBC CD59>95% WBC CD59>90% PNH的诊断值:RBC CD59>91% 大部分>80% 中性粒细胞CD59>84% |
临床意义 用于AA和PNH的诊断和分型诊断。PNH时CD55和CD59明显减低和缺如。 |
方案(Protocol) |
血小板膜表面抗体测定
(流式细胞仪)
医院检验科
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本规程每2年复审一次
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文件分发部门和/或个人
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检验科 实验室:
血小板膜表面抗体测定
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 直接免疫荧光法。FITC标记的各型多克隆抗体,加到经离心富集的血小板中,与血小板膜上的相应的IgG-Fc片段结合,经过洗涤(和固定)等步骤后,在流式细胞仪上进行分析。 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,空腹采血。 采集部位 静脉采血 抗凝剂 EDTA或肝素抗凝血 要求 1.样本量至少1ml。 2.样本应在采集后6小时内完成,冷冻的标本或已固定的标本不能用。 3.样本血小板计数应在150-450×109/L之间。若>450×109/L, 样本需要稀释,用PBS稀释;若<150×109/L,应多采集进行富集达到流式检测的细胞数。 4.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 联科 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:鞘液 液体 4:清洗液 液体 5:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
操作: 富集血小板法: 1)800r/min*15min,取上清, 2)加4-5ml鞘液,2000r/min*3min,弃上清,重复一次。 3)分别向已编好号的试管中加入10 ul单克隆抗体和同型对照(IgG-FITC) 4)分别向试管中加入准备好的10u1含血小板的PBS(血小板的量约为106)(血小板若在正常范围,稀释到原量直接取10u1。)。 5)混匀,避光,室温孵育20-30分钟 6)洗或不洗,上机测样 全血法: 1)加4-5ml鞘液,1500r/min*15min,弃上清,后同上3)-6) |
报告结果 报告百分数 |
操作性能 精密度 批内五次重复CV<2% 灵敏度 500—1000个荧光素分子 |
参考值 IgA<2.98% IgG<3.04% IgM<3.0% IgD<2.91% |
临床意义 为免疫性血小板减少性紫癜(ITP)诊断、治疗、预后估计的重要指标,在ITP、胶原性疾病时升高。 |
方案(Protocol) |
红细胞抗体测定
(流式细胞仪)
医院检验科
操作规程文件号:
200 年 月 日起实施
第1版
(共2页)
本规程每2年复审一次
复审日期: 年 月 日
复审人:
规程编写者:
审 批 者:
批准日期: 年 月 日
文件分发部门和/或个人
院档案室保管者:
检验科 主任:
检验科 实验室:
红细胞膜蛋白结构测定
(红细胞抗体)
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 直接免疫荧光法。FITC标记的各型多克隆抗体,加到全血中,与红细胞膜上的相应的IgG-Fc片段结合,经过洗涤(和固定)等步骤后,在流式细胞仪上进行分析。 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,空腹采血。 采集部位 静脉采血 抗凝剂 EDTA或肝素抗凝血 要求 1.样本量至少1ml。 2.样本应在采集后6小时内处理,冷冻的标本不能用。 3.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 联科 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:鞘液 液体 4:清洗液 液体 5:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
操作: 1)按照要求,分别向已编好号的试管中加入10 ul单克隆抗体和同型对照(IgG-FITC) 2)分别向试管中加入混匀的100u1抗凝血(1:200稀释后)。 3)混匀,避光,室温孵育20-30分钟 4)上机测样 |
报告结果 报告百分数 |
操作性能 精密度 批内五次重复CV<2% 灵敏度 500—1000个荧光素分子 |
参考值 IgA<2.78% IgG<2.98% IgM<2.52% IgD<2.88% |
临床意义 自身溶血性贫血的分型诊断 |
方案(Protocol) |
粒细胞抗体测定
(流式细胞仪)
医院检验科
操作规程文件号:
200 年 月 日起实施
第1版
(共2页)
本规程每2年复审一次
复审日期: 年 月 日
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规程编写者:
审 批 者:
批准日期: 年 月 日
文件分发部门和/或个人
院档案室保管者:
检验科 主任:
检验科 实验室:
粒细胞抗体测定
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 直接免疫荧光法。FITC标记的各型多克隆抗体,加到经溶血处理后的样本中,与粒系胞膜上的相应的IgG-Fc片段结合,经过洗涤(和固定)等步骤后,在流式细胞仪上进行分析 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,空腹采血。 采集部位 静脉采血 抗凝剂 EDTA或肝素抗凝血 要求 1.样本量至少1ml。 2.样本应在采集后6小时内处理,冷冻的标本不能用。 3. 样本白细胞计数应在4.0-10.0×109/L之间。若>10.0×109/L,样本需要稀释,用PBS稀释;若<4.0×109/L,应分离单个核细胞。 4.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 联科 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:鞘液 液体 4:清洗液 液体 5:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
操作: 1) 溶血:a. OptiLyse C(按说明书步骤溶血) b. 使用COULTER Q—PREP制备系统 开机---显示READY灯亮---选择35SEC灯亮---开门---放入试管关门---自动进行溶血---显示READY灯亮---开门---取出试管---再进行下一个样品测定。 (*溶血前确认A/B/C管路充满并能打出液体) 2)分别向已编好号的试管中加入10 ul单克隆抗体和同型对照(IgG-FITC) 2)分别向试管中加入经溶血处理得样本100u1。 3)混匀,避光,室温孵育20-30分钟,洗涤离心 4)上机测样 |
报告结果 报告百分数 |
操作性能 精密度 批内五次重复CV<2% 灵敏度 500—1000个荧光素分子 |
参考值 IgA<2.68% IgG<2.66% IgM<2.49% IgD<3.4% |
临床意义 白细胞减少症的分型诊断,大多数白细胞减少症患者抗体为阳性 |
方案(Protocol) |
白血病免疫分型测定
(流式细胞仪)
医院检验科
操作规程文件号:
200 年 月 日起实施
第1版
(共3页)
本规程每2年复审一次
复审日期: 年 月 日
复审人:
规程编写者:
审 批 者:
批准日期: 年 月 日
文件分发部门和/或个人
院档案室保管者:
检验科 主任:
检验科 实验室:
白血病免疫分型测定
方法 流式细胞仪(BeckmanCoulter,贝克曼库尔特) |
原理: 三色直接免疫荧光法。正常血细胞的分化成熟过程中,细胞膜、细胞浆有抗原的表达与血细胞的分化发育阶段密切相关,因此这些抗原的表达与否可作为鉴别细胞和其分化阶段的基础。利用荧光素标记的单克隆抗体对血液或骨髓进行染色,通过FCM对白血病细胞细胞膜和细胞浆抗原进行分析,由此了解所测白血病细胞的系列属性及其分化程度。三色染色在白血病免疫分型中较为常用。根据分型需要,选择相应抗原的标记抗体,一般FITC标记抗体和PE标记抗体搭配为一组,再加PC5标记抗原CD45单克隆抗体,共三种抗体加入一管 |
标本采集与处理 受检者的准备 检查对象生活饮食处于日常状态,腰穿采骨髓。 采集部位 腰穿采骨髓 抗凝剂 肝素抗凝 要求 1.样本量至少3ml。 2.样本应在采集后6小时内处理,冷冻的标本或已固定的标本不能用。 3.样本白细胞计数应在4.0-10.0×109/L之间。若>10.0×109/L, 样本需要稀释,用PBS稀释;若<4.0×109/L,应分离单个核 细胞。 4.溶血样本不能用。 |
试剂 品牌 剂型 规格 贮存 贝克曼库尔特 成分 1:单克隆抗体 液体 1ML 2— 2:全血溶血试剂 液体 A:甲酸 液体 70ML 室温 B:碳酸钠等 液体 32ML 室温 C:多聚甲醛 液体 14ML 室温 3:IntraPrep Permeabilization Reagent 成分1(固定剂) 液体 5ml 室温 成分2(透膜剂) 液体 5ml 室温 4:鞘液 液体 5:清洗液 液体 6:荧光微球 液体 10ML 2 质控品 BEKAMANCOULTER产品,未开瓶的试剂于2 |
仪器 BeckmanCoulter EPICS XL/FC500/Altra |
操作-样本制备: 细胞膜表面抗原 1.首先准备所需的管,并在管上标记上欲加入的抗体。 2.首先每管中加入5ul CD45-PC5抗体。 (来源: 来宝网 )
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